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離體豬皮膠帶剝離實(shí)驗(yàn):親脂性制劑影響與方案選擇

更新時(shí)間:2025-11-05 瀏覽次數(shù):102次

離體豬皮膠帶剝離實(shí)驗(yàn):親脂性制劑影響與方案選擇

在皮膚藥代動(dòng)力學(xué)研究中,膠帶剝離法(tape stripping)是評(píng)估藥物經(jīng)皮滲透行為的核心工具。通過(guò)定量分析每片膠帶上剝離的角質(zhì)細(xì)胞(corneocytes),可精準(zhǔn)計(jì)算藥物在角質(zhì)層(stratum corneum, SC)中的滲透深度與分布。然而,實(shí)驗(yàn)方案的細(xì)節(jié)(如制劑類型、膠帶粘性控制)可能顯著影響結(jié)果可靠性。本文系統(tǒng)解析親脂性制劑對(duì)膠帶剝離實(shí)驗(yàn)的干擾機(jī)制,并提出兩種經(jīng)驗(yàn)證的實(shí)驗(yàn)操作方案,為藥廠研發(fā)人員提供實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)參考。

研究背景:膠帶剝離法的價(jià)值與挑戰(zhàn)

膠帶剝離法通過(guò)逐層剝離皮膚表面的角質(zhì)層,結(jié)合定量分析技術(shù),成為體外皮膚藥代動(dòng)力學(xué)研究的 “金標(biāo)準(zhǔn)"。其價(jià)值在于:

·       可直接測(cè)定藥物在角質(zhì)層中的分布與滲透深度,關(guān)聯(lián)體外模型與在體生物利用度;

·       支持局部給藥制劑的生物等效性評(píng)價(jià)(如乳膏、軟膏、微乳液等半固體制劑)。

要實(shí)現(xiàn)可靠分析,精準(zhǔn)量化每片膠帶剝離的角質(zhì)細(xì)胞量是關(guān)鍵。目前主流方法包括:

·       重量法:通過(guò)膠帶重量差計(jì)算角質(zhì)層量,但靈敏度低;

·       蛋白測(cè)定法(如 microBCA 法):通過(guò)角質(zhì)蛋白含量間接量化,準(zhǔn)確性高但操作繁瑣;

·       近紅外密度法(NIR):基于角質(zhì)細(xì)胞對(duì)近紅外光的吸收特性快速定量,無(wú)需復(fù)雜前處理,可同步與 HPLC 聯(lián)用分析藥物含量,近年應(yīng)用廣泛。

850C角質(zhì) 

Labodorf 850C皮膚角質(zhì)測(cè)量?jī)x)

制劑成分的潛在干擾的問(wèn)題

NIR 法雖高效,但原理依賴光強(qiáng)度變化(角質(zhì)細(xì)胞對(duì)光的散射、反射和衍射的綜合作用)。若制劑中含親脂性成分(如油脂、蠟質(zhì)),可能干擾光信號(hào),導(dǎo)致角質(zhì)細(xì)胞量計(jì)算偏差。此外,親脂性制劑可能殘留于皮膚表面,破壞膠帶粘性,導(dǎo)致前期膠帶無(wú)法有效粘附角質(zhì)層,進(jìn)一步影響結(jié)果。

為此,本研究聚焦兩大關(guān)鍵問(wèn)題:

NIR 法在親脂性制劑存在時(shí)是否仍可靠?

如何優(yōu)化膠帶剝離方案,消除親脂性制劑對(duì)膠帶粘性的干擾?

實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì):材料、方案與檢測(cè)方法

1. 材料與制劑

·       皮膚模型:豬耳皮膚(人體皮膚替代模型,屏障功能與角質(zhì)層結(jié)構(gòu)相似),經(jīng)冷凍保存(-18℃,≤6 個(gè)月),實(shí)驗(yàn)前解凍并保留軟骨以避免收縮。

·       膠帶:角質(zhì)剝離膠帶(面積~4.0cm2),確保粘附力一致性。

·       模型藥物:氟氫可的松醋酸酯(FA,脂溶性藥物)、雙氯芬酸鈉(DS,水溶性藥物),均以 0.5%(w/w)濃度加入制劑。

·       制劑類型(按親脂性遞增排序)

① 微乳液(ME):含卵磷脂、異丙醇、肉豆蔻酸異丙酯(IPM),親脂性低;

② 水包油乳膏(WO 乳膏,Ultrabas®):含 30% 水、凡士林、液體石蠟,親脂性中等;

③ 無(wú)水軟膏(Ultralip®):含固體石蠟、凡士林、微晶蠟,無(wú)水分,親脂性最高。

2. 實(shí)驗(yàn)方案

為評(píng)估制劑對(duì)膠帶粘性的影響,設(shè)計(jì)兩種對(duì)比方案,核心差異在于是否去除皮膚表面過(guò)量制劑,具體如下表:

img2 

 

 

3. 檢測(cè)方法

·       皮膚角質(zhì)細(xì)胞量化:同步采用 NIR 法(850 皮膚角質(zhì)量測(cè)試儀)與 microBCA 法(測(cè)定角質(zhì)蛋白含量),對(duì)比兩種方法的一致性。

·       藥物含量測(cè)定:HPLC 法(FA 檢測(cè)波長(zhǎng) 240nm,DS 為 230nm),計(jì)算藥物在角質(zhì)層中的累積量與滲透深度。

發(fā)現(xiàn):親脂性制劑的影響與方案驗(yàn)證

1. NIR 法的可靠性驗(yàn)證

對(duì)比 NIR 與 microBCA 法對(duì)同一批膠帶的檢測(cè)結(jié)果(a 為近紅外 NIR 法,b 為 microBCA 法)發(fā)現(xiàn):

·       兩種方法測(cè)得的角質(zhì)細(xì)胞量變化趨勢(shì)一致,尤其在親脂性制劑存在時(shí),數(shù)據(jù)無(wú)顯著差異(P>0.05);

·       結(jié)論:NIR 法不受親脂性制劑干擾,可可靠用于角質(zhì)細(xì)胞量化,且操作更高效(單次檢測(cè)僅需數(shù)秒,支持高通量實(shí)驗(yàn))。

img3 

2.       “預(yù)剝離帶" 數(shù)量與制劑親脂性的關(guān)聯(lián)

img4 

實(shí)驗(yàn)觀察到,制劑親脂性越高,膠帶初始粘性受影響越大,所需預(yù)剝離帶數(shù)量越多:

·       微乳液(ME):僅需 1-2 條預(yù)剝離帶(非粘附膠帶),后續(xù)膠帶即可有效粘附角質(zhì)層;

·       WO 乳膏:需 7-8 條預(yù)剝離帶;

·       無(wú)水軟膏:需 7-8 條預(yù)剝離帶(與 WO 乳膏一致,因兩者殘留表面的脂類成分均較多)。

原因分析:親脂性成分(如凡士林、石蠟)在皮膚表面形成脂質(zhì)膜,阻礙膠帶與角質(zhì)層的物理結(jié)合,導(dǎo)致前期膠帶無(wú)法有效粘附。只有當(dāng)預(yù)剝離帶逐步清除表面殘留脂質(zhì)后,膠帶才能與角質(zhì)層接觸。

 

 

結(jié)論與實(shí)操建議

1. 結(jié)論

·       NIR 法可靠性確認(rèn):在親脂性制劑存在時(shí),NIR 法與 microBCA 法結(jié)果一致,可作為快速量化角質(zhì)細(xì)胞的方法;

·       親脂性與膠帶粘性的關(guān)聯(lián):制劑親脂性越高,表面殘留越多,需更多預(yù)剝離帶清除,否則會(huì)導(dǎo)致前期膠帶粘附失效;

·       方案推薦:

① 方案 A(去除過(guò)量制劑):適用于大多數(shù)常規(guī)實(shí)驗(yàn),操作簡(jiǎn)單,結(jié)果穩(wěn)定,無(wú)預(yù)剝離帶干擾;

② 方案 B2(保留過(guò)量制劑但排除預(yù)剝離帶):適用于研究藥物在 “制劑殘留 - 角質(zhì)層" 中的分配規(guī)律,需額外記錄有效粘附的膠帶編號(hào)。

2. 藥物研發(fā)實(shí)操建議

·       方法選擇:優(yōu)先采用 NIR 法,搭配 HPLC 同步分析藥物與角質(zhì)細(xì)胞量,大幅提升實(shí)驗(yàn)效率;

·       制劑分類處理

·       對(duì)于親脂性低的制劑(如微乳液、O/W 乳膏),可靈活選擇方案 A 或 B2;

·       對(duì)于高親脂性制劑(如無(wú)水軟膏、W/O 乳膏),必須采用方案 A 或 B2,不要使用 B1;

·       實(shí)驗(yàn)記錄要點(diǎn)

·       記錄預(yù)剝離帶數(shù)量(尤其方案 B),作為制劑親脂性的間接指標(biāo);

·       同步測(cè)定皮膚屏障完整性(如經(jīng)皮水分流失值,TEWL 值 <20g/m2/h 為合格),避免皮膚損傷影響結(jié)果。

精準(zhǔn)的實(shí)驗(yàn)方案是可靠數(shù)據(jù)的前提,選擇適配制劑特性的膠帶剝離方法,才能為藥物研發(fā)提供真正有價(jià)值的參考。

參考文獻(xiàn)

1】Alberti et al., 2001 I. Alberti, Y.N. Kalia, A. Naik, R.H. Guy Assessment and prediction of the cutaneous bioavailability of topical terbinafine, in vivo, in man. Pharm. Res., 10 (2001), pp. 1472-1475

2】Nagelreiter C, et al. Importance of a suitable working protocol for tape stripping experiments on porcine ear skin: Influence of lipophilic formulations and strip adhesion impairment. Int J Pharm. 2015;491(1-2):162-169.

3】Franzen et al., 2012 L. Franzen, M. Windbergs, S. Hansen Assessment of near-infrared densitometry for in situ determination of the total stratum corneum thickness on pig skin: influence of storage time

 


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